2. 广西壮族自治区林业科学研究院, 广西特色经济林重点实验室, 南宁 530002
2. Guangxi Zhuang Autonomous Region Forestry Research Institute, Guangxi Key Laboratory of Characteristic Economic Forest, Nanning 530001, China
大百合(Cardiocrinum giganteum)为百合科(Liliaceae)大百合属多年生鳞茎类草本植物,其花朵雅致芳香、鳞茎富含多种营养物质,集观赏、药用、食用价值为一体,应用价值高[1–3]。大百合鳞茎具有自然休眠的特性,这是多年生植物在不利环境下暂时停止生长的现象[4]。研究表明,未解除休眠的鳞茎种植后发芽率低且不能正常生长发育,多年生鳞茎必须经过一定的低温处理解除休眠后才能萌芽生长, 如大蒜(Allium sativum)、百合(Lilium brownii)[5]。在低温解除休眠过程中,生物体内的物质会产生一系列适应性变化,研究表明百合鳞茎在解除休眠进程中可溶性糖以及过氧化氢等产物会发生变化[6]。此外,次生代谢产物在植物对环境适应和对逆境胁迫条件的克服中起到非常关键的作用,在低温解除休眠过程中也取得一定的研究进展[7]。
酚类物质是指含有羟基芳香环的化合物,是植物苯丙烷类代谢过程中产生的次生代谢产物,普遍存在于植物组织中,并且在应对低温、干旱、紫外线辐射等非生物胁迫下积极响应[8]。研究表明,植物中酚类物质与休眠调控机制的关系十分复杂,酚类物质生物合成及运输相关的基因与植物生长和发育密切相关[9]。Fennell等[10]报道,木质素生物合成的咖啡酸-O-甲基转移酶可调控马铃薯(Solanum tuberosum)、覆盆子(Rubus idaeus)、杨树(Populus)的休眠过程,并可用作诱导休眠的标记基因。此外,在杏树(Prunus armeniaca)休眠期间大多数苯丙烷代谢产物的浓度随着休眠解除时间的推移而降低, 表明苯丙烷代谢产物与杏树休眠期的花芽休眠解除直接相关[11]。还有研究表明在解除休眠过程中, 酚类化合物可能会影响植物体内的细胞分裂和蛋白质的合成[12]。
转录因子是一种能与靶基因启动子区域中的顺式作用元件特异性结合并调控靶基因转录水平的蛋白质,其在植物休眠诱导、维持和解除中的调控作用已经得到广泛的研究[13]。转录因子在调节苯丙烷代谢物的生物合成中起着核心作用[8, 14]。目前发现多种参与调节休眠过程的转录因子,包括MYB、bHLH、WRKY、bZIP等转录因子家族,在葡萄(Vitis vinifera)芽休眠期观察到NAC转录因子与木质素合成相关基因的变化[15]。MYB家族的R2R3-MYB参与调控类黄酮合成,从而影响原花青素的含量以调控种子休眠[16–17]。
目前使用组学分析休眠及其解除调节机制的方法已经在唐菖蒲(Gladiolus hybridus)[18]、百合[19]、大蒜[20]、腊梅(Chimonanthus praecox)[21]、桃(Prunus persica)[22]等植物中取得了一定进展,而关于大百合的相关研究还相对滞后,仅有少量报道主要集中在引种栽培[23]、组织培养[24]、淀粉积累及种子休眠[25]等方面,而关于大百合鳞茎解除休眠的研究还未见报道。实验室前期已经对大百合解除休眠过程的碳水化合物代谢、激素代谢和能量代谢进行了研究, 但酚类物质对大百合休眠的调节作用尚未明确。所以本研究以4 ℃低温处理的大百合鳞茎为材料,采用转录组和代谢组测序技术对深度休眠、休眠解除和休眠解除后3个时期鳞茎的转录和代谢水平进行检测,分析了不同休眠时期基因表达和代谢物的差异,挖掘与解除休眠相关的酚类物质差异基因,筛选关键差异基因和转录因子并构建其相关作用网络,为解析大百合鳞茎休眠的分子机制,合理利用和调节休眠,实现大百合高效栽培提供理论依据。
1 材料和方法 1.1 试验材料选取无病虫害的独头大百合(Cardiocrinum giganteum)鳞茎,洗净后用50%多菌灵可湿性粉剂800倍水溶液杀菌30 min,晾干后放入4 ℃冰箱中冷藏处理。低温处理阶段,在冷藏前对大百合鳞茎进行第1次取样处理,之后每10 d取样1次,每次随机取3个鳞茎,测量每个鳞茎幼芽生长顶点离鳞茎顶端的距离,将样品分成外层鳞片、中层鳞片、内层鳞片3部分后立即冷冻在液氮中并储存在–80 ℃冰箱中待用。采用福林酚法分别测定外、中、内层鳞片的总酚含量,实验重复3次。
1.2 方法转录组测序 使用TIANGEN Biotech的RNA试剂盒分别提取4 ℃低温处理0 (CK)、30 (A)和60 d (B)大百合鳞茎混样的RNA,每个时期3个生物学重复,对RNA质量进行浓度和完整性测定。评估后,送公司进行转录组测序样品制备和文库建立;进行转录本拼接、注释和分类;对转录组数据进行差异表达量分析,采用FPKM方法标准化转录本或基因表达量。使用DESeq2进行差异分析,显著差异表达的阈值是log2(fold-change)的绝对值大于等于1且P值小于0.05。使用iTAK软件对差异表达基因进行预测,筛选转录因子。
代谢组提取和代谢谱分析 本研究使用UPLC-MS/MS进行广靶代谢组学分析,设置重复3次,对混合样品进行代谢物提取、上机检测、数据处理。分析仪器系统主要包括UPLC HSS T3色谱柱和AB Sciex QTOF高分辨质谱。对高分辨质谱数据,使用自建的BiotreeDB数据库及MAPS软件进行数据分析。
相关性分析 对筛选得到的关键代谢物和差异基因进行进一步分析,使用Spearman算法计算相关性,筛选相关系数(Corr)的绝对值大于0.85,相关性P值小于0.01的建立相关网络。此外,使用Spearman算法对转录因子的表达水平与关键代谢物的表达水平进行相关性分析。热图用于显示基因和代谢物之间的联系。
1.3 统计分析使用R中的Cor程序计算Spearman相关系数以及进行相关性热图的制作。SPSS 21用于数据分析,采用Waller-Duncan单因素方差分析方法比较差异的显著性水平。图形用Photoshop 6生成,网络图是由Cytoscape生成。
2 结果和分析 2.1 冷藏中芽伸长和总酚含量的变化新芽伸长是百合鳞茎打破休眠的一个重要形态指标。如图 1所示,低温处理前新芽生长点到顶端的距离为4.37 cm,冷藏30 d时小于1 cm,此时幼芽处于将发端的前期,表明鳞茎在4 ℃低温处理30 d时解除休眠。在冷藏60 d后新芽长出鳞茎约1 cm,说明鳞茎已经打破休眠,处于解除休眠后。外层、中层和内层鳞片的总酚含量都随着低温打破休眠时间的推移而降低,冷藏60 d时内层鳞片的总酚含量为处理前的65%,且内层鳞片的总酚含量显著高于外层、中层鳞片。
在大百合鳞茎解除休眠的代谢组中筛选到10种关键酚类代谢物。如图 2所示,咖啡酸和二氢槲皮素的含量随4 ℃冷藏时间的延长不断增加,在60 d完全打破休眠后达到峰值。肉桂酸、香豆素都是在30 d打破休眠时含量最高,此时的肉桂酸、香豆素含量分别是0 d的2和2.9倍,在冷藏60 d时有所下降。而对香豆酸、阿魏酸、香草酸、香兰素、水杨酸和琥珀酸都是0 d时的含量最高,在冷藏30和60 d,即打破休眠时均有不同程度下降。
在转录组中检测到66个与酚类代谢相关的差异表达基因(图 3),包括苯丙氨酸解氨酶、肉桂醇脱氢酶、查尔酮合酶等是苯丙烷途径中的关键结构基因,大多数的表达水平在休眠解除过程中发生了变化,说明低温处理打破休眠可以影响酚类代谢途径相关基因的表达。与结构基因类似,转录因子也参与调节植物中的各种生物过程。因此,本研究还分析了不同表达的转录因子(表 1),包括MYB、NAC、bHLH、WRKY、bZIP、TCP和ARF家族,这些转录因子中的大多数成员在后期表达呈下调趋势。
在低温处理的大百合鳞茎中调节苯丙烷代谢总通量的限速酶苯丙氨酸解氨酶的4个DEGs下调。在木质素合成过程中,编码肉桂醇脱氢酶、4-香豆酸辅酶A连接酶、肉桂酰辅酶A还原酶以及编码过氧化物酶的25个DEGs都是在未低温处理时的表达最高,冷藏30和60 d时均不同程度下降。检测到黄酮类代谢物合成中注释为查尔酮合酶的3个DEGs、查尔酮异构酶的1个DEGs和黄酮醇合酶的3个DEGs也都随着低温时间延长下调表达。而注释为黄烷酮-4-还原酶的1个DEGs在冷藏30 d解除休眠时的表达量最低。在合成香豆素的过程中,咖啡酰辅酶A-O-甲基转移酶在冷藏30 d时上调表达,60 d时下调表达。
2.4 转录产物和代谢组的联合分析为了解休眠解除过程中涉及的酚类调节网络, 本研究对转录组和代谢组筛选得到的结果进行了联合分析。图 4展现了关键酚类代谢物与其差异基因之间的相关性(正相关为1,负相关为–1),3个对比组共有52个差异表达基因与代谢物的Corr绝对值高于0.85且P值小于0.01相关。相关热图显示在解除休眠过程中,水杨酸、香草酸、肉桂酸和香豆素高度相关,因为与它们相关的大多数TFs和DEGs是共有的。从图 5可见,在许多与休眠相关的转录因子家族中,TCP、bHLH、bZIP、MYB和MADS的家族成员均与酚类物质高度相关。上述结果进一步证明,解除休眠过程不仅涉及特定路径的变化, 还涉及多个路径的相互作用。
基于转录组和代谢组联合分析的结果,进一步比较和筛选酚类代谢中涉及的DEGs和关键TFs以构建基因相关网络来探索其可能的相互作用(图 6)。结果表明, PAL、CAD、CCR、POD、bglB、CHS、GUS和BoGH3B高度相关,所有这些基因都与转录因子如MYB、bZIP和bHLH家族相关,且网络图中bHLH和WRKY的家族成员与差异基因均呈负相关。
目前,通常是以顶芽生长点距鳞茎顶端约1 cm作为百合冷藏解除休眠的形态依据[26]。本研究结果表明低温处理前,鳞茎处于深度休眠状态,而4 ℃处理30 d后,顶芽生长点到顶端的距离小于1 cm, 说明在4 ℃处理30 d时大百合鳞茎打破休眠,冷藏60 d时新芽冒出鳞茎顶端,此时鳞茎已经完全解除休眠,可以正常生长。
有研究表明酚类物质与植物的休眠相关,杏树休眠时酚类代谢物水平降低,其中总酚含量的降低还与寒冷时间的积累呈负相关[27],本研究结果与其相似。大百合休眠鳞茎中的阿魏酸、香兰素、琥珀酸等6种酚类物质的含量最高,并且随着低温时间推移而降低,表明这6种酚类物质的低水平表达有利于大百合鳞茎的萌发。有研究发现许多酚类物质和生物碱有抑制蛋白质合成的作用,阿魏酸和香草酸可以通过减少大豆(Glycine max)根对32P和甲硫氨酸的吸收,从而抑制蛋白质的合成[28],而可溶性蛋白大多数是植物体内参与各种代谢包括解除休眠过程的酶类[29]。本研究结果表明阿魏酸和香草酸含量的下降,降低了对蛋白质合成的影响,从而影响大百合鳞茎打破休眠的过程。肉桂酸在冷藏30 d解除休眠时的含量最高,因为肉桂酸可以作为抗氧化剂,所以可能在解除休眠中的低温胁迫期间的氧化应激中发挥作用。
基于筛选得到的酚类关键代谢物及相关差异基因,本研究构建了一个调节网络图,描绘了4 ℃低温诱导大百合鳞茎解除休眠的酚类代谢调控机制。对葡萄的研究表明,苯丙烷代谢途径的基因表达与休眠具有相关性[15]。本研究筛选到66个差异表达基因,包括PAL、4CL、CCR、CAD、POD等17个结构基因。低温处理后这些结构基因表达下调, 苯丙烷通路下调,减少了酚类物质的合成,其中PAL位于初生代谢和次生代谢分界处,作为调节进入苯丙烷代谢总通量的限速酶,已经在洋葱(Allium cepa)、甜樱桃(Prunus avium ‘Hongdeng’)和桃等植物休眠过程中检测到PAL的变化,喇叭水仙(Narcissus pseudonarcissus)鳞片中总酚含量在休眠解除过程中降低,且与PAL呈正相关,推测PAL是打破休眠的关键酶之一[30]。共表达结果也表明PAL与香兰素、香豆素和阿魏酸含量显著正相关。4CL、CCR、CAD、POD和HCT是木质素生物合成途径中的关键基因,而这些差异表达基因在休眠鳞茎的表达水平最高,表明在低温处理解除休眠后木质素的合成不活跃。此外,黄酮类化合物如山奈酚和槲皮素是已知的生长素运输的负调节剂,以及作为生长素分解代谢产物产生的活性氧的清除剂[31–32]。二氢槲皮素作为槲皮素的上游物质,在代谢组中检测到二氢槲皮素含量下降,而且在调节二氢槲皮素转化为槲皮素的FLS中注释的3个DEGs表达量都下降, 从而减少酚类对生长素运输的影响,进而促进解除休眠的进程。
共表达网络显示在解除休眠过程中,大多数的差异表达基因与酚类物质都是正相关,而且作为酚类代谢途径的主要正调节因子的PAL表达水平在冷藏期间显著下调。因此本研究表明酚类物质的合成与大百合鳞茎解除休眠相关,并且以降低酚类物质合成途径的方式参与调控解除休眠的进程,表明PALs可能在大百合鳞茎的解除休眠过程中起主要作用。
近年来,越来越多的转录因子家族(TFs)被证明参与植物休眠和发芽,而且在调节酚类代谢物的生物合成中起着核心作用[8]。基于转录组和代谢组的联合分析,我们发现大百合鳞茎休眠与一些关键的TFs直接相关,包括TCP、bHLH、bZIP、MYB、MADS家族的成员。MADS-box是调控休眠解除的重要转录因子,DAM与SVP基因被证实能够影响种子萌发与花发育,DAM可能在休眠阶段转变和休眠解除的需冷量中发挥关键作用[10, 33]。本研究筛选的10个MADS-box转录因子中8个成员在低温处理过程中下调表达,表明低温处理可能下调MADS-box表达以调节休眠过程。MYB转录因子影响植物各种发育过程,本研究共筛选到34个MYB成员, 是转录因子筛选中数量第二多的家族,其表达模式不尽相同。其中MYB4-2在解除休眠时期上调, MYB4可以增加转基因拟南芥(Arabidopsis thaliana)和苹果(Malus pumila)的冷冻耐受性[34]。而MYB114和MYB44在休眠鳞茎的表达量最高,红梨(Pyrus pyrifolia)的PyMYB114可以正调控其花青素的合成代谢[35],AGL16-MYB44互作会影响种子的休眠与萌发及植物对高温诱导开花的适应过程[36]。因此, MYB家族在解除休眠过程中可能与温度和酚类代谢调节有关。ICE1是bHLH家族中响应低温胁迫的成员,还参与维持拟南芥种子萌发的稳态[37]。bHLH、MYB和WD40组成的MBW三元复合物对木质素和黄酮合成的结构基因的调控被认为是酚类物质合成的关键[38]。本研究筛选到2个ICE1基因与咖啡酸含量呈显著负相关,表明MBW复合物可能通过调控酚类代谢进而解除休眠。这表明大百合鳞茎打破休眠是一个复杂的过程,涉及多种结构基因、转录因子和代谢物的变化及相互作用,所以今后有必要对酚类代谢相关机制进行更深入的研究。
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