苦瓜(Momordica charantia)为葫芦科(Cucurbitaceae)苦瓜属植物,营养价值高,降血糖效果突出,是亚洲和非洲部分地区重要的蔬菜和药用植物[1–2]。关于苦瓜品质的研究目前主要集中在营养成分和风味物质解析等方面[3–6],对于其它品质因子及形成原因的关注相对较少。作为重要的质地品质,果肉厚、瓤腔厚等性状对苦瓜的经济价值起关键作用, 其形成和变化受细胞大小、形态等微观因素的影响甚大[7]。植物细胞的外层结构为细胞壁,在维持细胞形态、控制细胞繁殖、抵御外力损伤等方面有较大作用[8]。细胞壁主要包括果胶、纤维素(cellulose, CE)、半纤维素(hemicellulose, HCE)及少量蛋白质和矿物质等成分,其合成、转移、水解等过程需要多种细胞壁相关酶的参与和协同调控。因此研究苦瓜果实发育过程中细胞壁物质及相关酶活性变化规律,对探讨苦瓜果实品质差异具有重要的指导意义。
细胞壁的结构与成分因物种、组织、细胞类型的不同而表现差异。研究表明,共价型果胶(covalent pectin,CSP)、HCE和CE含量降低可能是梨(Pyrus pyrifolia)[9]和蓝莓(Vaccinium corymbosum)[10]、山楂(Crataegus pinnatifida)[11]、木瓜(Carica papaya)[12]、杏(Prunus armeniaca)[13]和树莓(Rubus corchorifolius)[14]等果实后期成熟软化的重要因素。但也有研究表明,红肉枇杷(Eriobotrya japonica)水溶性果胶(water soluble pectin, WSP)含量随生长过程逐渐增加,而白肉枇杷的WSP含量呈先下降后快速上升趋势,2个品种的CSP含量在发育过程中均表现早期增加后期减少的动态规律,但离子型果胶(ionic pectin, ISP)含量变化呈无规则状态[15];随着果实生长发育,加工型橄榄(Canarium album) ‘长营’的HCE含量逐渐增大,而鲜食型橄榄“清榄1号”则逐渐减少[16];梨的CE含量的变化趋势没有什么规律,甚至发育后期含量较前期更高[17],这些说明细胞壁组分与果实成熟的关系不能一概而论。
细胞壁组分的变化大多需要果胶酶(pectinase, PE)、多聚半乳糖醛酸酶(polygalacturonase, PG)、β-半乳糖苷酶(β-galactosidase, β-Gal)、β-木糖苷酶(β-xylosidase, β-Xyl)、纤维素酶(cellulase, Cx)等代谢酶的催化,从而引起胞间层逐渐降解,导致相邻细胞失去连接而彼此分离[18]。早期研究表明,PE参与低温贮藏期间猕猴桃(Actinidia chinensis)的快速软化[19],是果实品控的关键因子;PG在果实成熟的后期起作用,可能与苹果的多汁性有关[20];β-Gal能降解植物组织初生细胞壁中的果胶和半纤维素,降低细胞壁组分稳定性[21],但乙烯利处理可以显著抑制β-Gal活性,延缓番茄(Lycopersicon esculentum)软化[22];β-Xyl可水解半纤维素核心成分木聚糖, 在香蕉(Musa nana)的成熟软化[23]、鸳鸯茉莉(Brunfelsia latifolia)和拟南芥(Arabidopsis thaliana)花色素苷的降解[24]等过程中发挥重要作用,其活性随番茄和蓝莓的成熟逐渐降低[25–26];Cx活性随桃(Prunus persica)的成熟而显著增加,并促进果胶酶催化果胶质的分解,导致细胞壁结构松散,最终导致桃细胞壁多糖的降解[27]。目前,关于细胞壁组分及相关酶活性在苦瓜果实生长发育过程中的作用研究尚未见报道。本研究以不同果肉厚度苦瓜(厚肉型‘LX1-3’和薄肉型‘ZK54’)为材料,探讨不同发育时期的果实性状、细胞壁物质含量及相关酶活性的变化,分析种质间的差异性和相关性,以期找出形成果实生长及品质差异的关键因素,为进一步研究苦瓜生长发育调控机理和品质改良提供依据。
1 材料和方法 1.1 材料以福建省蔬菜遗传育种重点实验室选育的厚肉型苦瓜(Momordica charantia ‘LX1-3’)和薄肉型苦瓜(‘ZK54’)为材料,于2021年3月17日穴盘育苗,3月28日定植于福建省农业科学院作物研究所福州基地大棚,5月上旬进入盛花期,开花当日授粉,分别于花后3、10、17和23 d (days after flower, DAF)进行果实性状观测, 并采样检测细胞壁组分及酶活性。
1.2 方法利用游标卡尺测量果实横径(fruit diameter, FD)和果实腔径(fruit lumen diameter, FLD),计算果肉厚度(pulp thickness, PT)=(FD-FLD)/2,利用电子天平先称取苦瓜鲜质量(fruit fresh weight, FFW),然后置于恒温烘箱中100 ℃杀青2 h,65 ℃烘干,称取干质量(fruit dry weight, FDW),每个性状5个重复。细胞壁组分和酶活性的检测设3次重复,每3个苦瓜混样为1个重复。
果实细胞壁物质的提取和分离参考Huber[28]和Siddiqui等[29]的方法并作了改进。称取约0.3 g果肉,加液氮快速研磨后,加入80%乙醇提取15 min, 90 ℃水浴20 min, 冷却至室温, 6 000×g, 25 ℃离心10 min, 弃上清,沉淀用1.5 mL 80%乙醇和丙酮各洗2次, 再用1 mL 90%二甲基亚砜浸泡15 h, 6 000×g, 25 ℃离心10 min,弃上清,将沉淀用蒸馏水清洗2次后置于60 ℃~100 ℃下烘干得到细胞壁物质。将上述细胞壁物质依次用1 mL 50 mmol/L乙酸钠(pH 6.5)、1 mL 50 mmol/L乙酸钠(含50 mmol/L EDTA)、1 mL 50 mmol/L碳酸钠(含2 mmol/L EDTA)各振荡提取3 h,每次8 000×g 4 ℃离心10 min收集上清液,3种上清液分别含有WSP、ISP和CSP。再向沉淀中加入1 mL 4 mmol/L NaOH (含100 mmol/L NaBH4)提取12 h后,10 000×g离心10 min,得到含HCE的上清液,最后沉淀则为CE。各果胶采用咔唑-硫酸比色法测定,以半乳糖醛酸溶液作标准曲线;半纤维素采用间苯三酚-冰醋酸法测定,以d-木糖溶液作标准曲线;纤维素含量采用蒽酮比色法测定, 以葡萄糖溶液作标准曲线。PG、β-Gal、β-Xyl、PE、Cx的提取和活性检测参照微量法试剂盒(北京索莱宝科技有限公司)进行。
1.3 数据分析所有数据以均值±标准误差表示,采用Excel 2010进行数据整理,通过SPSS 21.0软件进行相关性分析和多重比较(Duncan法),以P < 0.05表示显著差异,P < 0.01表示极显著差异。
2 结果和分析 2.1 果实性状差异2份种质的FD、FLD、PT、FFW和FDW均随发育过程而增加,相同发育时期不同性状表现不一。其中,‘ZK54’在3和10 DAF的5个性状均高于‘LX1-3’,且10 DAF的FFW差异显著;但17和23 DAF ‘LX1-3’的5个性状均大于‘ZK54’,且FD、FT、FFW和FDW的差异均达显著水平(图 1)。
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图 1 苦瓜不同发育时期的FD、FLD、PT、FFW和FDW。不同字母表示差异显著(P < 0.05)。FD: 果实横径; FLD: 果实腔径; PT: 果肉厚度; FFW: 果实鲜质量; FDW: 果实干质量。下同 Fig. 1 FD, FLD, PT, FFW and FDW in Momordica charantia at different developmental stages. Different letters indicate significant difference at 0.05 level. FD: Fruit diameter; FLD: Fruit lumen diameter; PT: Pulp thickness; FFW: Fruit fresh weight; FDW: Fruit dry weight. The same below |
如图 2所示,2份材料的5个细胞壁组分含量在不同发育时期的变化不同。‘LX1-3’的WSP含量为23>3>17>10 DAF (下同),‘ZK54’为23>10>3>17; ‘LX1-3’的ISP含量为10>23>3>17,‘ZK54’为10>17>23>3;‘LX1-3’的CSP含量为23>10>3>17, ‘ZK54’的CSP含量变化与ISP相似;‘LX1-3’的HCE和CE含量为3>10>23>17,‘ZK54’为10>3>17>23。‘LX1-3’在3和23 DAF的5种成分含量均高于‘ZK54’; ‘LX1-3’在10 DAF的WSP和CSP含量高于‘ZK54’,而ISP、HCE和CE含量则低于‘ZK54’; ‘LX1-3’在17 DAF的WSP、HCE和CE含量高于‘ZK54’, 其余2种成分则低于‘ZK54’。
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图 2 苦瓜不同发育时期的WSP、ISP、CSP、HCE和CE含量。WSP: 水溶性果胶; ISP: 离子型果胶; CSP: 共价型果胶; HCE: 半纤维素; CE: 纤维素。下同 Fig. 2 Contents of WSP, ISP, CSP, HCE and CE in Momordica charantia at different developmental stages. WSP: Water solube pectin; ISP: Ionic pectin; CSP: Covalent pectin; HCE: Hemicellulose; CE: Cellulose. The same below |
2个品种苦瓜的5种细胞壁相关酶活性在不同时期不同。‘LX1-3’的PG和β-Gal活性为3>17>23>10,‘ZK54’为3>23>17>10;2个品种的β-Xyl活性变化趋势相似,均为3>10>17>23;‘LX1-3’的PE活性为17>23>3>10,‘ZK54’为3>23>17>10;‘LX1-3’的Cx活性变化与β-Xyl相似,‘ZK54’为3>17>10>23。‘LX1-3’在3 DAF的PG和Cx活性均高于‘ZK54’, β-Gal、β-Xyl和PE活性则低于‘ZK54’;‘LX1-3’在10 DAF的PG、PE和Cx活性高于‘ZK54’, 其余2种酶活性则低于‘ZK54’;‘LX1-3’在17 DAF的PG、β-Gal、PE和Cx活性高于‘ZK54’,β-Xyl则低于‘ZK54’; ‘LX1-3’在23 DAF的β-Xyl和PE活性高于‘ZK54’, 其余3种酶活性则低于‘ZK54’ (图 3)。
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图 3 苦瓜不同发育时期的PG、β-Gal、β-Xyl、PE和Cx活性。PG: 多聚半乳糖醛酸酶; β-Gal: β-半乳糖苷酶; β-Xyl: β-木糖苷酶; PE: 果胶酶; Cx: 纤维素酶。下同 Fig. 3 Activities of PG, β-Gal, β-Xyl, PE and Cx in Momordica charantia at different developmental stages. PG: Ploygalacturonase; β-Gal: β-galactosidase; β-Xyl: β-xylosidase; PE: Pectinase; Cx: Cellulase. The same below |
对果实性状、细胞壁组分和相关酶活性共计15个指标进行相关分析(表 1),结果表明,5个果实性状(FD、PT、FLD、FFW和FDW)间均存在极显著正相关关系;在细胞壁组分中,WSP与CSP间呈显著正相关,ISP与CSP呈极显著正相关,与纤维素含量呈显著正相关;在细胞壁相关酶活性中,PG与β-Gal和β-Xyl间存在极显著正相关关系,与PE呈显著正相关性,β-Gal与β-Xyl间呈极显著正相关。细胞壁组分WSP含量与PT、FFW和FDW间呈显著正相关;细胞壁相关酶活性与生长性状和细胞壁组分间多数存在负相关关系,PG活性分别与FD和CSP含量呈极显著负相关,与PT、FLD、ISP含量呈显著负相关;β-Gal活性与FD、PT、FLD呈极显著负相关,与FFW、FDW、CSP含量呈显著负相关;β-Xyl活性与5个果实性状间呈极显著负相关,与CSP含量呈显著负相关;PE与ISP和CSP含量间呈极显著负相关;Cx活性与5个果实性状间呈显著负相关。
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表 1 苦瓜不同发育时期15个指标之间的相关性 Table 1 Correlation between 15 indicators in different developmental stages of bitter gourd |
瓜果类蔬菜产品的经济价值与质量、果径、瓤腔径、果肉厚等数量性状,以及熟性、颜色等质量性状密切相关,但不同性状、同一性状在不同种质间或不同发育阶段均存在差异。研究表明,华南型黄瓜(Cucumis sativus)不同品种的FLD差别最大, 且与FD呈极显著正相关[30],FT与FFW及产量呈极显著及显著正相关[31]。长果型黄瓜FD在6 DAF最大,9 DAF的增长速度变慢。短果型黄瓜FD则在12 DAF最大[32]。苦瓜的遗传基础丰富,张燕等[33]报道51份苦瓜种质资源中有16份的品质性状的平均变异系数达到29.24%,其中FD与FT、FFW与FD等8对性状间呈现极显著正相关;张玉灿等[34]对9个杂交组合苦瓜果实膨大过程进行观察,FFW和FD在8 DAF内增长缓慢,8~20 DAF快速膨大,从20 DAF到转色、成熟继续缓慢增长并最终趋于稳定。本研究表明,2份苦瓜种质的FD、FLD、FT、FFW和FDW在3~10和10~17 DAF这2个时期增长迅速,其中薄肉型这5个性状在3~10 DAF略高于厚肉型,而在10~17 DAF时期厚肉型逐渐超过薄肉型,并在17 DAF达到显著差异,在17~23 DAF这5个性状逐渐趋于平稳,表明苦瓜生长规律基本相似,但也存在品种间差异,须进行具体分析。相关性分析表明,这5个性状间呈极显著正相关关系,由此推断苦瓜这些生长性状随果实的发育变化明显,相互之间关系紧密,且有较大的品种效应,在遗传改良上具有较大潜力。
细胞壁组分会随着果实发育阶段的不同而出现变化。研究表明,不同质地甜瓜(Cucumis melo)果实细胞壁各组分含量差异较大,随着甜瓜的发育和成熟,WSP和ISP含量不断增加,但CSP、CE和HCE含量不断减少[35];不同枣(Ziziphus jujuba)类果胶和CE降解起始时间不同,木枣发生在完熟期, 冬枣在脆熟期[36];随着果实的成熟,不同橄榄的WSP和CSP含量变化规律相似,但ISP含量表现不同, 加工型橄榄‘长营’呈先上升后下降的趋势;而鲜食型橄榄‘清榄1号’总体呈上升趋势[16]。本研究表明,3种果胶在2种苦瓜种质发育过程中的变化趋势各不相同,其中,WSP含量整体水平表现为厚肉型高于薄肉型,ISP和CSP表现为厚肉型“升-降-升”和薄肉型“先升后降”趋势,CSP含量与WSP、ISP含量分别存在显著和极显著正相关关系,WSP含量与FT、FFW和FDW呈显著正相关,HCE和CE含量变化趋势相似,17 DAF厚肉型的均高于薄肉型, 再次证明细胞壁组分因种质、发育过程不同而呈现变化,对果实生长产生不同的影响,而发育中后期HCE和CE可能与苦瓜果肉增厚有较大联系。
在果实生长发育过程中,多种细胞壁酶参与调控果胶和纤维素-半纤维素的水解,造成细胞间连接减少、细胞离散,影响果实品质,这些酶在不同果实中或者同一果实的不同发育阶段发挥不同的主导作用。研究表明,PG和β-Gal活性随灵武长枣的成熟而逐渐上升[37],且两者差异很可能是造成不同葡萄(Vitis vinifera)品种质地差异的主要原因[38];PE活性对库尔勒香梨(Pyrus sinkiangensis)、子用西瓜(Citrullus lanatus var. megalaspermus)和哈密瓜(Cucumis melo var. saccharinus)的耐贮性均有影响[39–41];β-Gal和Cx的活性与甘薯(Ipomoea batatas)的腐烂率和失重率呈极显著正相关[42],但与哈密瓜果实硬度呈极显著负相关[41]。Cx可能促进橄榄果实中CE降解[16],但番茄果实Cx活性随生长发育基本保持不变,与CE含量的升高并无关联[21]; 表明细胞壁代谢相关酶在不同种类果实中的作用机制可能存在差异。本研究表明,不同的苦瓜种质之间以及不同酶之间其活性差异较大,其中PG和PE在厚肉型种质中呈“降-升-降”的趋势,而在薄肉型种质中呈“先降后升”趋势,两者与ISP和CSP含量“升-降-升”和“先升后降”的变化趋势呼应,β-Gal和β-Xyl活性在3 DAF显著高于其他时期,但随着果实发育,β-Xyl活性在2份种质中均依次下降,β-Gal活性在厚肉型中17 DAF小幅上升,呈“降-升-降”趋势,薄肉型呈“先降后升”趋势,相关分析显示,部分酶活性之间呈(极)显著正相关,酶活性与成分之间以及与果实性状之间呈(极)显著负相关,表明酶与酶之间存在一定的协同作用,其活性影响细胞壁组分的合成和降解,β-Xyl和β-Gal活性在3 DAF显著高于其它时期,表明两者在苦瓜早期生长的调控效应较其他阶段较高,此结果符合大多数植物果实早期发育的细胞变化规律,即在果实生长发育早期主要以细胞分裂为主,细胞壁裂解频繁,需要许多细胞壁酶进行高效作业,以达到快速获得大量细胞的目的。相关性分析结果也印证了在果实发育后期即细胞分裂结束后,酶活性趋于平稳,细胞转入膨大生长期,随着细胞体积的膨大,果实也随之不断增大,最终影响苦瓜果实的产量及品质。
综上,苦瓜的FD、FLD、FT、FFW和FDW随果实发育不断增大,细胞壁组分HCE和CE含量可能对中后期果实发育,尤其是果肉增厚有较大影响,细胞壁代谢相关酶活性与果实发育也关系紧密,β-Xyl和β-Gal活性在花后3 d高于其他时期, 推测这2种酶可能与苦瓜早期发育有较大关联,具体机制需进一步深入研究。
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