2. 红云红河集团昆明卷烟厂, 昆明 650202
2. Kunming Cigarette Factory of Hongyunhonghe Group, Kunming 650202, China
酸性土壤已覆盖我国长江以南15个省区,总面积约占全国总耕地面积的21% [1],红黄壤土地面积大,具脱硅富铝化成土过程,致使铝毒害日益严重[2]。铝毒害作为酸性土壤中植物生长发育的主要限制因子[3],主要以铝的氧化物或铝硅酸盐等固定态铝的形式存在于自然条件下,可供生物利用价值较小[4]。酸性土壤中铝毒对植物的危害首先作用于根部,反映于根部形态和生理特征[5]:破坏植物根尖结构,阻碍植物根系对营养元素的吸收,进而使植株地上茎、叶生长发育受抑制,最终致使产量和品质下降或停止生长[6-11]。
苜蓿(Medicago sativa)是世界上栽培面积最大、栽植最早、经济价值最高的牧草,有改良土壤、保持水土等作用,因而有“牧草之王”之美誉[12]。苜蓿作为全球最重要的优良豆科牧草,对生态环境的改善起着重要作用,对于牲畜而言,优良的苜蓿干草胜过一切优质的粗饲料[13],但由于其抗酸铝能力差,极大地限制了在我国南方地区的种植[5]。
目前,国内外关于铝对麦类[9]植物、大豆(Glycine max)和水稻(Oryza sativa)[14]等农作物的毒害和耐铝毒机理等方面的研究已有较多报道,但对苜蓿耐铝性研究相对较少;且由于苜蓿材料和耐铝性评价体系不同,仍未见报道强耐铝苜蓿资源。因此,研究酸铝胁迫下苜蓿幼苗生长状况,筛选耐铝性品种便显得十分重要。本研究测定了8份苜蓿属种质材料在铝胁迫下的地上和地下部分生物量、叶片光合色素和根尖胼胝质含量,并观察苜蓿根尖细胞对铝毒的敏感度,最后采用隶属函数分析法进行耐铝性综合评价,为开展苜蓿耐铝性研究奠定基础,亦为后期筛选耐铝性较强的苜蓿品种提供理论依据。
1 材料和方法 1.1 材料来源前期课题组于云南省各地州进行苜蓿资源调查,收集到云南野生和逸生苜蓿(Medicago)种质资源30份。通过栽种和生产性能的评价鉴定,筛选出生长状况良好、且采集地pH值和生存环境差异性较大的8份材料(表 1),并进行繁殖收种,用作耐铝性鉴定[15]。
在人工智能温室中,采用12孔育苗盘、珍珠岩育苗,发芽后浇Hoagland完全营养液培育10 d, 然后开始铝胁迫处理;将营养液pH调至4.5,用AlCl3配置成浓度为0、50、100、200、500 µmol/L的铝溶液,胁迫处理10 d。试验期间,隔3 d更换1次营养液。铝胁迫处理后进行指标测定。
1.3 方法生物量 随机选取20株,用滤纸吸干根、茎、叶的水分,置于分析天平分别称量地上、地下部分鲜质量。
光合色素含量 随机剪取20株苜蓿新鲜叶片,参照王爱玉等[16]的方法,取0.1 g叶片于95%乙醇中避光浸泡96 h后用分光光度计在470、649、665 nm波长下测定吸光值,计算叶片叶绿素(Chl) a、Chl b、Chl a+b和类胡萝卜素(Car)的含量,重复3次。
根尖胼胝质含量 参考Kohle等[17]的方法, 随机剪取5株根尖5 mm的根段,经研磨、提取、高温(80℃)水浴、冷却后加入苯胺蓝显色液,并吸取上清液与空白液混匀,采用荧光分光光度法测定,计算胼胝质含量,重复3次。
根尖切片的显微观察 随机切取10株苜蓿1 cm长根尖,用200 mL蒸馏水浸泡15 min,再用50 mL 0.2%苏木精溶液染色20 min,在根尖0~3 mm处切薄片,置于显微镜200×物镜下观察根尖细胞形态并拍照。
综合评价 采用隶属函数法进行。与耐铝性呈正相关的指标(叶绿素、生物量)用R(Xij)=(Xij- Xjmin)/(Xjmax-Xjmin)计算隶属函数值; 与耐铝性呈负相关的指标(胼胝质含量)用R(Xij)=1-(Xij-Xjmin)/ (Xjmax-Xjmin)计算隶属函数值; 用R(Xi)=∑Xij/n计算某胁迫浓度下苜蓿各指标的隶属函数值,式中,R(Xij)为i处理j指标的耐铝隶属函数值;Xij为i处理j指标的测定值;Xjmax为最大值;Xjmin为最小值;Xi为i处理的耐铝隶属函数值的平均值;n为指标数。
1.4 数据分析用Excel 2010和SPSS 20.0进行数据统计及作图,并进行单因素方差分析。
2 结果和分析 2.1 对苜蓿地上、地下生物量的影响铝胁迫抑制苜蓿地上生物量的积累(表 2),随着铝胁迫浓度的增加,苜蓿地上部分生物量均显著降低(P < 0.05),以500 µmol/L铝浓度时最低。其中, No. 11和No. 21苜蓿在铝浓度为500 µmol/L时表现较迟钝,地上生物量降低幅度有所减缓,与200 µmol/L的差异不显著(P > 0.05)。
从表 3可见,随着铝胁迫浓度的增加,苜蓿的地下部分生物量也呈下降趋势。低浓度(50 µmol/L)铝胁迫时,地下部分生物量比对照显著下降(P < 0.05)。No. 11、No. 18和No. 21苜蓿在≤100 µmol/L铝处理时,地下部分生物量显著降低(P < 0.05),而当胁迫浓度为200 µmol/L时,其地下部分生物量虽有下降,但差异不显著(P > 0.05),这表明3份苜蓿在中、高浓度铝胁迫下产生了一定抗性。但随胁迫浓度继续升高,地下部分的耐受力减弱,所有苜蓿地下部分生物量均呈显著下降趋势(P < 0.05)。
叶绿素a含量 由图 1可看出,铝处理抑制苜蓿叶绿素(Chl) a的合成,但不同苜蓿对胁迫的敏感性不同。当铝浓度为50 µmol/L时,所有苜蓿叶片的Chl a含量比对照显著减少(P < 0.05),说明苜蓿遭受逆境胁迫能立即响应;随着铝浓度的增加,所有苜蓿叶片的Chl a含量与对照间的差异均达显著水平(P < 0.05),且当铝浓度增至500 µmol/L时,Chl a含量降至最低;其中,No. 11、No. 12、No. 22和No. 27苜蓿在中、高浓度(100、200 µmol/L)铝胁迫时,Chl a含量均无显著变化(P > 0.05)。
Chl b含量 由图 1可见,随着铝胁迫浓度的增加,苜蓿叶片中Chl b含量均有不同程度的下降,但较Chl a含量变化平缓。其中,低浓度(50 µmol/L)铝胁迫对No. 3和No. 5苜蓿的Chl b含量有促进作用,比对照升高,但随胁迫的增强, Chl b含量显著下降(P < 0.05);No. 11和No. 27苜蓿在100 µmol/L铝胁迫时,Chl b含量虽有下降,但与50 µmol/L铝胁迫的差异不显著(P > 0.05); No. 12和No. 21苜蓿受铝胁迫的Chl b含量均比对照显著下降,但各胁迫处理间的Chl b含量差异不显著。
类胡萝卜素含量 从图 1可见,苜蓿叶片的类胡萝卜素(Car)含量随铝胁迫浓度的增加呈下降趋势。No. 11、No. 22、No. 27苜蓿叶片的Car含量在50~200 µmol/L铝胁迫时下降,但未达显著差异;No. 12苜蓿受中、高浓度(100~500 µmol/L)铝胁迫时,Car含量变化不显著,说明其对铝胁迫敏感度较低,存在一定耐受性。
Chl a+b含量 由图 1可知,铝处理抑制苜蓿叶绿素的合成,铝胁迫浓度为500 µmol/L时Chl a+b含量最低,各处理间的差异显著(P < 0.05)。但不同材料对不同胁迫浓度的反应敏感性不同,其中,No. 22苜蓿的Chl a+b含量在50~500 µmol/L铝胁迫下的差异不显著(P > 0.05), No. 11的Chl a+b含量在50~200 µmol/L铝胁迫下的差异不显著(P > 0.05),当胁迫浓度达500 µmol/L时显著下降;而No. 12苜蓿叶片Chl a+b含量受≥200 µmol/L铝胁迫时的变化不显著。
2.3 对根尖胼胝质含量的影响从图 2可见,随着铝胁迫浓度升高,苜蓿根尖的胼胝质含量逐渐升高。No. 3、No. 21和No. 22苜蓿的根尖胼胝质含量在中、高浓度(200、500 µmol/L)铝胁迫时虽有升高,但差异不显著(P > 0.05),可能是对铝胁迫产生了一定的适应性。
苜蓿经铝胁迫处理后,根尖横切面的细胞变化明显(图 3)。对照(0 µmol/L)的苜蓿根尖细胞排列规则且均匀饱满,各组织结构清晰可辨。经铝胁迫处理后,细胞排列紊乱,表层细胞大量脱落,且随胁迫浓度增加而更加明显。在500 µmol/L铝胁迫下, 细胞排列不规则且干瘪,皮层薄壁组织细胞的细胞壁形态异常。
采用隶属函数分析法对8份苜蓿材料的耐铝性进行评价(表 4), 结果表明,在铝浓度为50 µmol/L时, 苜蓿耐铝性的排序为: No. 12 > No. 18 > No. 27 > No. 22 > No. 3 > No. 11 > No. 5 > No. 21;当浓度为100 µmol/L时,排序为: No. 12 > No. 18 > No. 27 > No. 22 > No. 3 > No. 11 > No. 5 > No. 21;当浓度为200 µmol/L时,排序为: No. 12 > No. 18 > No. 27 > No. 22 > No. 3 > No. 11 > No. 21 > No. 5;当浓度为500 µmol/L时, 排序为: No. 12 > No. 18 > No. 22 > No. 27 > No. 11 > No. 3 > No. 21 > No. 5。可见,No. 12和No. 18苜蓿的表现较好,No. 21和No. 5苜蓿的表现较差。
生物量是植株生长状况的直观反应,可作为筛选耐性品种的重要依据指标[18]。本研究结果表明, 随铝胁迫浓度增加,苜蓿生长受到抑制,耐受性减弱,地上、地下部分生物量减少。但胁迫浓度在一定范围内,生物量的变化趋于平缓,No. 3、No. 21苜蓿在100 µmol/L浓度胁迫时地上部分生物量的下降幅度比50 µmol/L的小(表 2);No. 11、No. 18苜蓿在200 µmol/L胁迫时的地上部分生物量的下降幅度比100 µmol/L的小(表 3)。逆境环境下,植物可通过改变生理适应机制及其形态策略来应对胁迫[19],其生长受抑制程度会趋于平缓,但当超过该限度时, 便会影响植物正常代谢和生长发育进程。严重铝胁迫会阻碍植物代谢,从而影响植物正常生长,减少生物量的累积,这与前人[20-22]的研究结果一致。
3.2 铝胁迫降低光合色素含量本试验中,铝胁迫下8份苜蓿材料叶片的Chl和Car含量均比对照下降,且Chl a含量比Chl b含量减少得更多。肖祥希等[23]对铝胁迫下龙眼(Dimocarpus longans)生长影响的研究也有相同结论。Al3+会破坏苜蓿叶片的光合色素系统,使光合色素合成受阻或加速降解,导致光合色素含量降低,但不同苜蓿对Al3+的耐受性存在差异,因而对不同浓度的铝胁迫敏感性不同。No. 3、No. 5苜蓿叶片的Chl b含量呈先升后降的变化(图 1),这与李贞霞等[24]报道辣椒(Capsicum annuum)对铝胁迫响应结果一致, 低浓度铝胁迫可能促进Chl b的合成,或者是物种对低浓度铝胁迫反应不敏感,然而随胁迫浓度加大,则表现出不耐受反应。植物叶片中Car能猝灭不稳定的三线态叶绿素的功能,并具有强氧化作用,对光合膜有潜在作用的单线态氧,从而达到保护受光激发的叶绿素免遭光氧化破坏的效果,以减少光合膜受单线态氧的损伤[23]。有研究表明[19, 25-26], 当植物处于逆境胁迫环境时,会使体内的Car含量升高。一般认为,抗逆性较好的植物叶片的Car含量普遍较高。但在本试验中,铝胁迫下8份苜蓿材料的Car含量均比对照下降,这与张永锋等[26]的研究结果不一致,这可能是由于植物的抗氧化保护系统的抵抗修复能力存在一定阈值[27],如果逆境胁迫超过该阈值,其抗氧化保护系统也会降低或丧失保护功能,因此铝胁迫将导致苜蓿抗逆性的降低。
3.3 铝毒害诱导苜蓿根尖胼胝质形成铝作为一种酸性土壤中较为常见的矿质逆境元素,对植物的毒害在外观上主要表现为根系伸长受抑制[28],质外体和细胞壁作为植物最早与铝接触的部位,铝可被表皮或皮层细胞的细胞壁强烈吸附[29],因此,铝毒害会影响纤维素的合成,继而诱导胼胝质的形成[30-31],并且随着铝胁迫浓度的升高,胼胝质含量也增加。这已在多种植物中报道, 如燕麦(Avena sativa)[32]、小麦(Triticum aestivum)[28, 33]、大麦(Hordeum vulgare)[30]、玉米(Zea mays)[34-35]、烟草(Nicotiana tabacum)[36]、菜豆(Phaseolus vulgaris)[37]和挪威云杉(Picea abies)[38]。本研究中,苜蓿材料均在遭受低浓度铝胁迫时迅速在根尖累积胼胝质,并随着铝胁迫浓度升高,胼胝质含量逐渐增高,也有部分苜蓿材料在高浓度铝胁迫时,根尖胼胝质含量变化不显著(P > 0.05)。有研究表明[39-41],植物在受到机械损伤、生理逆境或病菌感染时,胼胝质合酶催化大量合成胼胝质;并且,铝诱导胼胝质的形成是一个迅速而又敏感的生理反应[42],这与本试验结果一致。铝诱导根尖胼胝质的形成比根伸长的研究更可靠,因此被广泛应用在植物耐铝性机制的研究中。
3.4 铝胁迫导致苜蓿根尖细胞排列紊乱一般认为,根尖是铝毒害的最初作用部位,于外表现在根尖形态的变化,于内则表现为细胞结构的破坏。本试验中,8份苜蓿材料根尖细胞随铝胁迫浓度增加而变化明显,细胞排列紊乱且表皮细胞受损严重,这与Delhaize等[29]对小麦铝耐性研究结果一致,植物对铝毒的敏感程度与根系中的铝含量呈正相关。由于Al3+在根尖细胞壁中大量积累造成破坏,使得细胞结构、排列发生改变。
综合分析表明,No. 12和No. 18苜蓿在铝胁迫处理中的表现均较好,有较高的耐受性;其次为No. 27、No. 22、No. 3和No. 11;No. 21和No. 5苜蓿,耐受性较低。
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